做完IP-MS,一次鉴定出几百个蛋白,经过筛选终于找到了几个感兴趣的候选互作蛋白。
那么问题来了:这些蛋白真的和目标蛋白存在互作吗?Co-IP有条带就能证明吗?如果还想知道两个蛋白具体是哪个区域结合,又该怎么做?
常见的研究思路是:IP-MS筛选 → Co-IP验证 → GST pull-down验证直接结合 → 截短体定位互作区域 → 点突变验证关键位点。
辉骏生物结合Nature Communications文献,带大家看看这些实验具体怎么设计,结果又该怎么看。
如果已知目标蛋白(Bait),但不知道它的互作蛋白,可以通过IP-MS筛选。

图1 内源IP-MS筛选SFRP1的互作蛋白
内源IP-MS与外源IP-MS有什么区别?
内源IP-MS是直接利用目标蛋白抗体进行IP,但常规抗体轻重链可能干扰WB检测或质谱鉴定。
外源IP-MS则过表达带有Flag、HA等标签的诱饵蛋白,利用标签纳米抗体磁珠来进行IP实验,能彻底避免轻重链污染,无论是WB还是质谱实验都是适用的。

图2 外源IP-MS筛选Flag-TPL2的互作蛋白
IP-MS鉴定到的蛋白不一定都是真正的互作蛋白,还需要实验进一步验证。
辉骏生物IP专用二抗、Flag/HA/V5/GFP/RFP 这5款类型的标签纳米抗体磁珠,有效避免抗体轻重链污染,结合量高,亲和力强。
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筛选出候选蛋白后,通常先做Co-IP,验证两个蛋白在细胞内是否存在相互作用。
以FGL1和TRIM21为例,用FGL1抗体进行IP,再通过WB检测TRIM21,同时设置IgG对照组。

图3 Co-IP实验分组设计
如果IP实验组能够检测到TRIM21,且IgG组没有明显特异信号,说明二者存在互作。

图4 Co-IP验证FGL1与TRIM21蛋白互作
GST pull-down使用体外表达纯化的重组蛋白,可用于研究两个蛋白是否直接结合。
以GST-X和His-Y为例,将GST-X固定在谷胱甘肽磁珠上,再加入His-Y孵育,同时设置GST空载对照组。洗涤后,通过WB检测是否富集到His-Y。

图5 GST pull-down实验分组设计
如果GST-X组能够检测到HIS-Y蛋白,而GST空载组没有明显富集,说明GST-X与HIS-Y蛋白存在互作。

图6 GST pull-down验证GST-X与HIS-Y蛋白互作
如果已经验证两个蛋白存在互作,还可以继续研究它们到底是哪个区域在结合?
可以参考UniProt、Pfam、InterPro及文献中的结构域信息设计截短体;如果没有明确线索,可先将蛋白分成较大的片段,再逐步缩小范围。
例如,将A蛋白分成A1、A2、A3几个片段,分别与B蛋白进行Co-IP。

图7 A蛋白截短体实验设计
CoIP结果显示A-FL和A2可以拉下B,而A1、A3不能,说明A与B的互作区域初步定位在201–400aa。

图8 截短体Co-IP定位A与B互作结构域
如果还想进一步缩小范围,可以继续构建201-300aa、251-350aa、301-400aa等重叠截短体,再通过Co-IP继续定位。
找到互作区域后,还可以结合分子对接和点突变实验,进一步研究哪些氨基酸参与结合。
实际研究中,这些实验又是怎么串起来的?以一篇Nature Communications文献为例。
IP-MS:筛选鉴定出Asprosin的候选互作蛋白为PFKP(图9A)。
正反拉Co-IP:证实Asprosin与 PFKP存在互作(图9B、C)。
His pull-down: 进一步证明二者能够直接结合(图9D)。
截短体Co-IP:实验表明PFKP的D1结构域是与Asprosin的互作区域(图9E、F)。
突变体Co-IP:Asprosin突变后,与PFKP结合能力显著丧失(图9G)。
研究思路: IP-MS 筛选 → Co-IP 验证 → His pull-down进一步验证 → 截短体互作区域定位 → 分子对接与突变验证。


图9 IP-MS筛选GCLM互作蛋白
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简单来说:IP-MS找候选,Co-IP验证互作,GST pull-down验证直接结合,截短体Co-IP定位关键区域。

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