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‌【收藏】GST Pull-down实验技术全解析:原理+步骤+结果解读

实验原理


GST pull-down技术是体外条件下研究蛋白质相互作用的方法。先将体外表达的GST融合蛋白结合到谷胱甘肽Beads上,再将靶蛋白-GST-Beads和样本裂解液(动物、植物或微生物)孵育,这样互作蛋白便一起吸附在Beads上。洗涤掉未结合的蛋白后,再用洗脱液将互作蛋白复合物从Beads洗脱下来,即GST pull-down产物。

这种互作复合物既可以用Western Blot检测已知蛋白,也可用质谱鉴定出未知蛋白。


应用背景

蛋白-蛋白间的相互作用是蛋白质发挥生物学功能的主要模式,蛋白质会通过结合不同的伙伴来行使不同的功能,形成复杂的信号转导网络

常见的蛋白相互作用方法主要有免疫共沉淀(Co-IP)、pull-down、酵母双杂交、荧光双分子互补(BiFC)、荧光共定位等。

pull-down技术将目标蛋白进行体外原核表达,使标签蛋白(GST或His等)与目标蛋白融合表达,借助标签的亲和介质将目标蛋白纯化出来,可以不受抗体、物种限制,比较轻松的获得目标蛋白的结合蛋白,还可以通过外源同时表达目标蛋白和待测蛋白,确定它们是否发生直接的相互作用,或者确定两个蛋白结合的结构域,但该方法无法得知体内真实的结合情况。

实验步骤

实验大致步骤:GST融合蛋白的诱导表达GST-诱饵蛋白和GST蛋白制备→GST-诱饵蛋白纯化→待测蛋白制备GST pull-down→WB检测是否存在靶蛋白/质谱鉴定洗脱液中的蛋白

GST融合蛋白的诱导表达

1)将测序正确的“GST-目的基因”融合蛋白表达载体提取质粒,用大肠杆菌BL21感受态细胞进行转化。在1.5 mEP管中加入200 µL含氨苄抗生素的LB培养基,挑取单克隆菌落接种到培养基中,置于37℃摇床上进行过夜培养; 

2)取100 µL菌液以1:100的比例接入10 mL新配制的LB培养基中,然后置于37℃摇床上培养;

3)1.5-2 h左右,检测菌液OD=600。当菌液的OD=600值达到0.4-0.6时,取100 µL菌液,12000 g离心1 min。弃去培养基,用40 µL的PBS将沉淀重悬,然后加入10 μL5xloading buffer,开水煮10 min;

(4)向剩余的菌液加入5 μ100 mMIPTG确保终浓度为0.05 mmol/L,置于220 rpm16℃的恒温摇床诱导24 h左右。IPTG诱导时间视目的蛋白情况而定)

2 GST-诱饵蛋白和GST蛋白制备 

(1)取已诱导表达可溶性GST-诱饵蛋白或GST蛋白的大肠杆菌菌液,4℃ 5000 g离心5 min,弃上清,收集大约50 μL菌体沉淀; 

(2)加入1 mL预冷的PBS,吹打混匀,4℃ 5000 g离心5 min,弃上清; 

(3)重复上步操作两次,共漂洗三次,尽量吸干液体; 

(4)将样本置于冰上,向菌体中加入500 μL预冷的裂解缓冲液(辉骏货号:FI81015 μL蛋白酶抑制剂(辉骏货号:FI8105,吹打混匀,冰上超声破碎至溶液基本澄清;

(5)4℃ 12000 g离心15 min,收集上清至新的离心管中,取30 μL作为Bait-input作为阳性对照剩余用于pull-down实验,置于冰上备用或-80℃保存。

3 GST-诱饵蛋白纯化 

(1)将GST标签纯化树脂(辉骏货号:FI8304)颠倒混匀,实验组和对照组各取45 μL树脂到新的1.5 mL EP管中; 

(2)每组加入200 µL漂洗液辉骏货号:FI8107,颠倒混匀30次,500 g离心5 min,弃上清; 

(3)重复上步操作一次; 

(4)向实验组树脂中加入表达GST-诱饵蛋白的大肠杆菌裂解液(20 µg纯化好的GST-诱饵蛋白)向对照组树脂中加入表达GST空载体的大肠杆菌裂解液(20 µg纯化好的GST蛋白),放混匀仪上4℃孵育1-2 h;  

(5)4℃ 500 g离心5 min,弃上清; 

(6)每组加入500 μL漂洗液,颠倒混匀30次,4℃ 500 g离心5 min,弃上清; 

(7)重复上步操作两次,共漂洗三次,得到纯化的GST-诱饵蛋白树脂。

4 待测蛋白制备 

1)用预冷的PBS漂洗2-3次处理细胞样本,每次4℃ 500 g离心5 min,收集沉淀,尽量吸干液体;

(2) 将样本管置于冰上,每组加入300-500 μL预冷的裂解缓冲液、3-5 μL蛋白酶抑制剂(按1%添加),吹打混匀; 

(3) 冰上超声破碎至溶液基本澄清; 

(4) 4℃ 12000 g离心15 min,收集上清至新的离心管中;取30 μL作为Prey-input将余下蛋白样本用于pull-down实验。

* 注意:①当样本不能完全裂解时(溶液很浑浊),可以增加裂解缓冲液或改善超声条件继续裂解。根据经验,样本蛋白浓度通常不低于3 μg/μL,总量约1-3 mg。 

②如果样本中目标蛋白丰度较低,或结合物间的结合较弱,可以增加初始样本量。

5 GST pull-down 

(1)向上GST-诱饵蛋白树脂中加入待测样本裂解液,放混匀仪上室温孵育3 h或4℃孵育过夜

(2)4℃ 500 g离心5 min,弃上清; 

(3)每组加入500 μL漂洗液,颠倒混匀30次,4℃ 500 g离心5 min,弃上清; 

(4)重复上步漂洗操作两次,共漂洗三次; 

(5)每组加入50 μL洗脱缓冲液(辉骏货号:FI8102),涡旋震荡20 s,放混匀仪上室温洗脱15 min; 

(6)涡旋震荡20 s,4℃ 12000 g离心5 min,收集上清至新的离心管中,-80℃保存,或直接用于Western Blot、SDS-PAGE或质谱实验。

WB检测是否存在靶蛋白/质谱鉴定洗脱液中的蛋白

6.1 WB检测是否存在靶蛋白

通过蛋白印迹(Western Blot)技术分别使用Anti-GST和Anti-prey对沉淀中的蛋白质进行检测,若能够在pull-down中检测到prey蛋白,则说明这两种蛋白之间存在相互作用。

6.2 质谱鉴定洗脱液中的蛋白

通过质谱(MS)技术对洗脱液中的蛋白成分进行鉴定和分析,筛选诱饵蛋白的未知互作蛋白。辉骏生物自有质谱检测平台,擅长IP、pull-down产物等微量蛋白的质谱鉴定及生信分析。


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